关于 arboreto
Arboreto 是用于从基因表达数据推断基因调控网络的 Python 库,提供 GRNBoost2 和 GENIE3 算法,并通过 Dask 并行处理单细胞及 bulk 表达分析。
主要功能
- 01GRNBoost2 和 GENIE3 推断
- 02Dask 并行计算
- 03本地及远程集群运行
- 04转录因子筛选
- 05支持稀疏矩阵输入
适用场景
- 01推断单细胞 RNA-seq 调控网络
- 02筛选转录因子分析 bulk RNA-seq
- 03比较不同条件下的调控网络
安装
复制下面的命令,在终端中运行。
npx skills add https:/ / github.com/ kalarislabs/ research-agent-skills --skill arboreto安装后在 Claude Code 中输入/arboreto确认已加载。
包含的文件
除 SKILL.md 外,安装时一起下载的参考资料和脚本。
references/algorithms.mdbasic_inference.mddistributed_computing.mdscripts/basic_grn_inference.py详细介绍
Arboreto
概述
Arboreto 是 Aerts Lab 提供的 Python 库,可根据基因表达数据推断基因调控网络(GRN)。它通过 Dask 并行运行基于树的集成回归(GRNBoost2、GENIE3),支持本地核心或远程集群。
核心功能:根据不同观测对象(细胞、样本、条件)的表达模式,识别哪些转录因子(TF)调控哪些目标基因。
上游:PyPI 0.1.6(2021-02-09,最新版本)。文档:arboreto.readthedocs.io。主要下游使用者:pySCENIC。
快速开始
安装 arboreto:
uv pip install arboreto
基本的 GRN 推断:
import pandas as pd
from arboreto.algo import grnboost2
if __name__ == '__main__':
# Load expression data (genes as columns)
expression_matrix = pd.read_csv('expression_data.tsv', sep='\t')
# Infer regulatory network
network = grnboost2(expression_data=expression_matrix)
# Save results (TF, target, importance)
network.to_csv('network.tsv', sep='\t', index=False, header=False)
重要提示:务必使用 if __name__ == '__main__': 保护块,因为 Dask 会启动新进程。
核心功能
1. 基本 GRN 推断
适用于标准 GRN 推断工作流,包括:
- 准备输入数据(Pandas DataFrame 或 NumPy 数组)
- 使用 GRNBoost2 或 GENIE3 运行推断
- 按转录因子筛选
- 输出格式与解读
参见:references/basic_inference.md
使用可直接运行的脚本:scripts/basic_grn_inference.py 执行标准推断任务:
python scripts/basic_grn_inference.py expression_data.tsv output_network.tsv --tf-file tfs.txt --seed 777 --limit 5000
2. 算法选择
Arboreto 提供两种算法:
GRNBoost2(推荐):
- 基于梯度提升的快速推断
- 针对大型数据集(10k+ 个观测对象)进行了优化
- 大多数分析的默认选择
GENIE3:
- 基于随机森林的推断
- 原始的多元回归方法
- 用于比较或验证
快速比较:
from arboreto.algo import grnboost2, genie3
# Fast, recommended
network_grnboost = grnboost2(expression_data=matrix)
# Classic algorithm
network_genie3 = genie3(expression_data=matrix)
算法详细比较、参数和选择指南:references/algorithms.md
3. 分布式计算
将推断从本地多核环境扩展到集群环境:
本地(默认) - 自动使用所有可用核心:
network = grnboost2(expression_data=matrix)
自定义本地客户端 - 控制资源:
from distributed import LocalCluster, Client
local_cluster = LocalCluster(n_workers=10, memory_limit='8GB')
client = Client(local_cluster)
network = grnboost2(expression_data=matrix, client_or_address=client)
client.close()
local_cluster.close()
集群计算 - 连接到远程 Dask 调度器:
from distributed import Client
client = Client('tcp://scheduler:8786')
network = grnboost2(expression_data=matrix, client_or_address=client)
集群设置、性能优化和大规模工作流:references/distributed_computing.md
安装
uv pip install arboreto
Conda(Bioconda):
conda install -c bioconda arboreto
依赖项(来自上游 requirements.txt):dask[complete]、distributed、numpy、pandas、scikit-learn、scipy
输入格式:pandas DataFrame、稠密 numpy.ndarray 或稀疏 scipy.sparse.csc_matrix(行 = 观测对象,列 = 基因)。对于数组/矩阵输入,需显式传入 gene_names。
常见用例
单细胞 RNA-seq 分析
import pandas as pd
from arboreto.algo import grnboost2
if __name__ == '__main__':
# Load single-cell expression matrix (cells x genes)
sc_data = pd.read_csv('scrna_counts.tsv', sep='\t')
# Infer cell-type-specific regulatory network
network = grnboost2(expression_data=sc_data, seed=42)
# Filter high-confidence links
high_confidence = network[network['importance'] > 0.5]
high_confidence.to_csv('grn_high_confidence.tsv', sep='\t', index=False)
使用 TF 筛选的 Bulk RNA-seq
from arboreto.utils import load_tf_names
from arboreto.algo import grnboost2
if __name__ == '__main__':
# Load data
expression_data = pd.read_csv('rnaseq_tpm.tsv', sep='\t')
tf_names = load_tf_names('human_tfs.txt')
# Infer with TF restriction
network = grnboost2(
expression_data=expression_data,
tf_names=tf_names,
seed=123
)
network.to_csv('tf_target_network.tsv', sep='\t', index=False)
比较分析(多个条件)
from arboreto.algo import grnboost2
if __name__ == '__main__':
# Infer networks for different conditions
conditions = ['control', 'treatment_24h', 'treatment_48h']
for condition in conditions:
data = pd.read_csv(f'{condition}_expression.tsv', sep='\t')
network = grnboost2(expression_data=data, seed=42)
network.to_csv(f'{condition}_network.tsv', sep='\t', index=False)
输出解读
Arboreto 返回包含调控关联的 DataFrame:
| 列 | 描述 |
|---|---|
TF | 转录因子(调节因子) |
target | 目标基因 |
importance | 调控重要性评分(越高 = 越强) |
筛选策略:
- 在推断时使用
limit=N(全局返回前 N 个关联) - 事后设置重要性阈值(例如 > 0.5)
- 通过
groupby('target')获取每个目标的前几项关联 - 进行统计显著性检验(置换检验、外部工具)
与 pySCENIC 集成
Arboreto 为 pySCENIC 中的 GRN 推断步骤提供支持。pySCENIC 0.11+ 会将稀疏表达矩阵传递给 grnboost2 / genie3;pySCENIC 0.12+ 默认使用 arboreto_with_multiprocessing.py(不使用 Dask)以确保兼容性——需要通过 Dask 扩展计算时,请单独使用 arboreto。
# Standalone: infer co-expression modules before pySCENIC cisTarget pruning
from arboreto.algo import grnboost2
network = grnboost2(expression_data=expression_df, tf_names=tf_list, limit=5000)
# Downstream: pySCENIC ctx pruning, regulon definition, AUCell (see pySCENIC docs)
将 AnnData 直接转换为 DataFrame,供 arboreto 使用:
expression_df = adata.to_df() # cells x genes
可复现性
务必设置种子,以确保结果可复现:
network = grnboost2(expression_data=matrix, seed=777)
运行多个种子以进行稳健性分析:
from distributed import LocalCluster, Client
if __name__ == '__main__':
client = Client(LocalCluster())
seeds = [42, 123, 777]
networks = []
for seed in seeds:
net = grnboost2(expression_data=matrix, client_or_address=client, seed=seed)
networks.append(net)
# Consensus: links recurring across runs (example: mean importance per TF-target pair)
import pandas as pd
combined = pd.concat(networks)
consensus = (
combined.groupby(['TF', 'target'], as_index=False)['importance']
.mean()
.query('importance > 0.5')
)
故障排查
内存错误:通过过滤低方差基因来缩小数据集,或使用分布式计算
性能缓慢:使用 GRNBoost2 而非 GENIE3,启用分布式客户端,过滤 TF 列表
Dask 错误:确保脚本中有 if __name__ == '__main__': 保护(在使用基于 spawn 的多进程的 Windows/macOS 上为必需)
结果为空:检查数据格式(基因作为列),确认 TF 名称与表达矩阵中的列名相匹配
稀疏数据:使用 scipy.sparse.csc_matrix 并传入匹配的 gene_names;arboreto 0.1.6 / pySCENIC 0.11 起支持
Agent 操作流程
- 检查环境。 确认工具版本、参考基因组/注释版本以及输入格式(FASTQ、BAM、VCF、h5ad)。
- 确认输入。 根据数据或用户提供的信息确认格式、标识符和参数。任何会改变结果的值,都应询问而不是猜测。
- 先运行小规模版本。 先在小型子集上运行流水线(一个样本、一条染色体、几千个细胞)。
- 按照上述说明和参考资料执行完整任务。
- 验证结果。 在解读结果之前,检查 QC 指标、样本身份、基因组版本一致性和批次效应。
- 报告。 说明运行了什么(版本、命令、参数)、检查了什么,以及还有哪些不确定之处。
| 如果发生这种情况 | 请这样做 |
|---|---|
| 输入之间的基因组版本或标识符不匹配 | 停止并协调统一(liftover、ID 映射)后再继续。 |
| 这些说明中提到的函数、标志或端点在已安装版本中不存在 | 查阅已安装版本自身的文档(help()、--help、官方文档),进行调整并告知用户。切勿编造 API。 |
| 必需的输入、标识符或参数不明确 | 询问用户,或在运行前明确说明假设。 |
完整性规则
- 切勿捏造结果、参数、标识符、引文或统计数据。如果无法运行或验证某项内容,请如实说明。
- 不要对超出统计数据支持范围的生物学意义作出解读;报告多重检验校正。
- 此处与版本相关的细节可能已过时:请根据已安装版本的官方文档进行确认。
- 对于会产生费用、占用共享 GPU 或云配额、涉及个人或患者数据,或无法撤销的操作,必须事先征求同意。
相关技能
cellxgene-census:以编程方式查询 CZ CELLxGENE Census,获取带版本信息的公共单细胞和空间转录组数据。pydeseq2:使用 PyDESeq2(DESeq2 的 Python 移植版)对 bulk RNA-seq 计数数据进行差异表达分析。bulk-rnaseq:端到端 bulk RNA-seq 编排器——将原始 FASTQ 读取数据依次处理为 QC 和修剪(FastQC、fastp/Trim Galore)、比对和定量…