关于 lamindb
LaminDB 是面向生物学数据的开源数据框架,通过 Python API 管理数据集、追踪来源并支持可查询和可复现的研究工作流。适用于生物数据管理与分析团队,并结合版本管理、验证和本体注释。
主要功能
- 01数据集版本管理与溯源
- 02按元数据和特征查询
- 03模式验证与数据整理
- 04生物本体标准化注释
- 05对接工作流与机器学习工具
适用场景
- 01追踪单细胞分析的输入与结果
- 02按特征筛选和流式读取大型数据集
- 03验证数据并统一本体术语
- 04关联机器学习实验与数据产物
安装
复制下面的命令,在终端中运行。
npx skills add https:/ / github.com/ crazymsn/ academic-skills --skill lamindb安装后在 Claude Code 中输入/lamindb确认已加载。
包含的文件
除 SKILL.md 外,安装时一起下载的参考资料和脚本。
references/annotation-validation.mdcore-concepts.mddata-management.mdintegrations.mdontologies.mdsetup-deployment.md详细介绍
LaminDB
概述
LaminDB 是一个面向生物学的开源数据框架,旨在让数据可查询、可追溯、可复现,并符合 FAIR(可发现、可访问、可互操作、可重用)原则。它通过单一 Python API 提供统一平台,整合了湖仓架构、谱系追踪、特征存储、生物学本体、LIMS(实验室信息管理系统)和 ELN(电子实验记录本)功能。
核心价值主张:
- 可查询性:按元数据、特征和本体术语搜索与筛选数据集
- 可追溯性:从原始数据到分析再到结果,自动追踪数据谱系
- 可复现性:对数据、代码和环境进行版本控制
- 符合 FAIR 原则:使用生物学本体进行标准化注释
何时使用此技能
在以下情况下使用此技能:
- 管理生物学数据集:scRNA-seq、bulk RNA-seq、空间转录组学、流式细胞术、多模态数据、EHR 数据
- 追踪计算工作流:笔记本、脚本、流水线执行(Nextflow、Snakemake、Redun)
- 整理和验证数据:架构验证、标准化、基于本体的注释
- 使用生物学本体:基因、蛋白质、细胞类型、组织、疾病、通路(通过 Bionty)
- 构建数据湖仓:跨多个数据集的统一查询接口
- 确保可复现性:自动版本控制、谱系追踪、环境捕获
- 集成 ML 流水线:连接 Weights & Biases、MLflow、HuggingFace、scVI-tools
- 部署数据基础设施:设置本地或基于云的数据管理系统
- 协作处理数据集:使用标准化元数据共享经过整理和注释的数据
核心功能
LaminDB 提供六个相互关联的功能领域,每个领域都在 references 文件夹中详细说明。
1. 核心概念和数据谱系
核心实体:
- Artifacts:带版本的数据集(DataFrame、AnnData、Parquet、Zarr 等)
- Records:实验实体(样本、扰动、仪器)
- Runs & Transforms:计算谱系追踪(哪些代码生成了哪些数据)
- Features:用于注释和查询的带类型元数据字段
关键工作流:
- 从文件或 Python 对象创建并对 artifacts 进行版本控制
- 使用
ln.track()和ln.finish()追踪笔记本/脚本执行 - 使用带类型的特征为 artifacts 添加注释
- 使用
artifact.view_lineage()可视化数据谱系图 - 按来源查询(查找特定代码/输入生成的所有输出)
参考: references/core-concepts.md - 阅读本文,详细了解 artifacts、records、runs、transforms、features、版本控制和谱系追踪。
2. 数据管理和查询
查询功能:
- 使用自动补全探索和查找注册表
- 使用
get()、one()、one_or_none()检索单条记录 - 使用比较运算符筛选(
__gt、__lte、__contains、__startswith) - 基于特征的查询(按已注释的元数据查询)
- 使用双下划线语法跨注册表遍历
- 跨注册表全文搜索
- 使用 Q 对象进行高级逻辑查询(AND、OR、NOT)
- 无需加载到内存即可流式处理大型数据集
关键工作流:
- 使用筛选条件和排序浏览 artifacts
- 按特征、创建日期、创建者、大小等查询
- 以分块或数组切片的方式流式处理大型文件
- 使用分层键组织数据
- 将 artifacts 分组到集合中
参考: references/data-management.md - 阅读本文,全面了解查询模式、筛选示例、流式处理策略和数据组织最佳实践。
3. 注释与验证
整理流程:
- 验证:确认数据集符合所需的架构
- 标准化:修正拼写错误,将同义词映射为规范术语
- 注释:将数据集关联到元数据实体,以便查询
架构类型:
- 灵活架构:仅验证已知列,允许添加额外元数据
- 最小必需架构:指定必要列,允许添加额外列
- 严格架构:完全控制结构和值
支持的数据类型:
- DataFrames(Parquet、CSV)
- AnnData(单细胞基因组学)
- MuData(多模态)
- SpatialData(空间转录组学)
- TileDB-SOMA(可扩展数组)
关键工作流:
- 定义特征和架构,以验证数据
- 使用
DataFrameCurator或AnnDataCurator进行验证 - 使用
.cat.standardize()标准化值 - 使用
.cat.add_ontology()映射到本体 - 保存带有架构关联的整理后制品
- 按特征查询已验证的数据集
参考:references/annotation-validation.md — 阅读此文,了解详细的数据整理工作流、架构设计模式、验证错误处理方法和最佳实践。
4. 生物学本体
可用本体(通过 Bionty):
- 基因(Ensembl)、蛋白质(UniProt)
- 细胞类型(CL)、细胞系(CLO)
- 组织(Uberon)、疾病(Mondo、DOID)
- 表型(HPO)、通路(GO)
- 实验因子(EFO)、发育阶段
- 生物(NCBItaxon)、药物(DrugBank)
关键工作流:
- 使用
bt.CellType.import_source()导入公开本体 - 通过关键词或精确匹配搜索本体
- 使用同义词映射标准化术语
- 探索层级关系(父级、子级、祖先)
- 根据本体术语验证数据
- 使用本体记录注释数据集
- 创建自定义术语和层级结构
- 处理多生物上下文(人类、小鼠等)
参考:references/ontologies.md — 阅读此文,全面了解本体操作、标准化策略、层级导航和注释工作流。
5. 集成
工作流管理器:
- Nextflow:跟踪管道进程和输出
- Snakemake:集成到 Snakemake 规则中
- Redun:与 Redun 任务跟踪结合使用
MLOps 平台:
- Weights & Biases:关联实验与数据制品
- MLflow:跟踪模型和实验
- HuggingFace:跟踪模型微调
- scVI-tools:单细胞分析工作流
存储系统:
- 本地文件系统、AWS S3、Google Cloud Storage
- 兼容 S3 的服务(MinIO、Cloudflare R2)
- HTTP/HTTPS 端点(只读)
- HuggingFace 数据集
数组存储:
- TileDB-SOMA(支持 cellxgene)
- 使用 DuckDB 对 Parquet 文件执行 SQL 查询
可视化:
- 使用 Vitessce 进行交互式空间/单细胞可视化
版本控制:
- 使用 Git 集成跟踪源代码
参考:references/integrations.md — 阅读此文,了解集成模式、代码示例以及第三方系统的故障排查方法。
6. 设置与部署
安装:
- 基础安装:
uv pip install lamindb - 安装额外组件:
uv pip install 'lamindb[gcp,zarr,fcs]' - 模块:bionty、wetlab、clinical
实例类型:
- 本地 SQLite(开发)
- 云存储 + SQLite(小型团队)
- 云存储 + PostgreSQL(生产)
存储选项:
- 本地文件系统
- 支持可配置区域和权限的 AWS S3
- Google Cloud Storage
- 兼容 S3 的端点(MinIO、Cloudflare R2)
配置:
- 云文件缓存管理
- 多用户系统配置
- Git 仓库同步
- 环境变量
部署模式:
- 从本地开发迁移到云端生产
- 多区域部署
- 共享存储与个人实例
参考:references/setup-deployment.md — 阅读此文,了解详细的安装、配置、存储设置、数据库管理、安全最佳实践和故障排查。
常见用例工作流
用例 1:通过本体验证进行单细胞 RNA-seq 分析
import lamindb as ln
import bionty as bt
import anndata as ad
# Start tracking
ln.track(params={"analysis": "scRNA-seq QC and annotation"})
# Import cell type ontology
bt.CellType.import_source()
# Load data
adata = ad.read_h5ad("raw_counts.h5ad")
# Validate and standardize cell types
adata.obs["cell_type"] = bt.CellType.standardize(adata.obs["cell_type"])
# Curate with schema
curator = ln.curators.AnnDataCurator(adata, schema)
curator.validate()
artifact = curator.save_artifact(key="scrna/validated.h5ad")
# Link ontology annotations
cell_types = bt.CellType.from_values(adata.obs.cell_type)
artifact.feature_sets.add_ontology(cell_types)
ln.finish()
用例 2:构建可查询的数据湖仓
import lamindb as ln
# Register multiple experiments
for i, file in enumerate(data_files):
artifact = ln.Artifact.from_anndata(
ad.read_h5ad(file),
key=f"scrna/batch_{i}.h5ad",
description=f"scRNA-seq batch {i}"
).save()
# Annotate with features
artifact.features.add_values({
"batch": i,
"tissue": tissues[i],
"condition": conditions[i]
})
# Query across all experiments
immune_datasets = ln.Artifact.filter(
key__startswith="scrna/",
tissue="PBMC",
condition="treated"
).to_dataframe()
# Load specific datasets
for artifact in immune_datasets:
adata = artifact.load()
# Analyze
用例 3:集成 W&B 的 ML 流水线
import lamindb as ln
import wandb
# Initialize both systems
wandb.init(project="drug-response", name="exp-42")
ln.track(params={"model": "random_forest", "n_estimators": 100})
# Load training data from LaminDB
train_artifact = ln.Artifact.get(key="datasets/train.parquet")
train_data = train_artifact.load()
# Train model
model = train_model(train_data)
# Log to W&B
wandb.log({"accuracy": 0.95})
# Save model in LaminDB with W&B linkage
import joblib
joblib.dump(model, "model.pkl")
model_artifact = ln.Artifact("model.pkl", key="models/exp-42.pkl").save()
model_artifact.features.add_values({"wandb_run_id": wandb.run.id})
ln.finish()
wandb.finish()
用例 4:Nextflow 流水线集成
# In Nextflow process script
import lamindb as ln
ln.track()
# Load input artifact
input_artifact = ln.Artifact.get(key="raw/batch_${batch_id}.fastq.gz")
input_path = input_artifact.cache()
# Process (alignment, quantification, etc.)
# ... Nextflow process logic ...
# Save output
output_artifact = ln.Artifact(
"counts.csv",
key="processed/batch_${batch_id}_counts.csv"
).save()
ln.finish()
入门清单
要有效使用 LaminDB,请按以下步骤操作:
-
安装与设置(
references/setup-deployment.md)- 安装 LaminDB 和所需的额外组件
- 使用
lamin login进行身份验证 - 使用
lamin init --storage ...初始化实例
-
了解核心概念(
references/core-concepts.md)- 了解 Artifacts、Records、Runs 和 Transforms
- 练习创建和检索 artifacts
- 在工作流中实现
ln.track()和ln.finish()
-
掌握查询(
references/data-management.md)- 练习筛选和搜索注册表
- 学习基于 feature 的查询
- 尝试流式处理大型文件
-
设置验证(
references/annotation-validation.md)- 定义与研究领域相关的 feature
- 为数据类型创建 schema
- 练习整理工作流
-
集成本体(
references/ontologies.md)- 导入相关的生物本体(基因、细胞类型等)
- 验证现有注释
- 使用本体术语标准化元数据
-
连接工具(
references/integrations.md)- 与现有工作流管理器集成
- 连接 ML 平台以跟踪实验
- 配置云存储和计算资源
核心原则
使用 LaminDB 时,请遵循以下原则:
-
跟踪一切:在每项分析开始时使用
ln.track(),自动捕获数据沿袭 -
尽早验证:定义 schema,并在开展大量分析前验证数据
-
使用本体:利用公开的生物本体实现标准化注释
-
使用键组织数据:按层级结构组织 artifact 键(例如,
project/experiment/batch/file.h5ad) -
优先查询元数据:先筛选和搜索,再加载大型文件
-
使用版本管理,而非复制:修改时使用内置版本管理功能,而不是创建新键
-
使用 feature 标注:为可查询的元数据定义类型化 feature
-
详尽记录:为 artifacts、schema 和 transforms 添加描述
-
利用数据沿袭:使用
view_lineage()了解数据来源 -
从本地起步,再扩展到云端:使用 SQLite 在本地开发,使用 PostgreSQL 部署到云端
参考文件
此技能包含按功能整理的全面参考文档:
references/core-concepts.md- Artifacts、records、runs、transforms、features、版本管理、数据沿袭references/data-management.md- 查询、筛选、搜索、流式处理和数据组织references/annotation-validation.md- schema 设计、整理工作流、验证策略references/ontologies.md- 生物本体管理、标准化和层级结构references/integrations.md- 工作流管理器、MLOps 平台、存储系统和工具references/setup-deployment.md- 安装、配置、部署和故障排除
根据当前任务所需的 LaminDB 功能,阅读相关参考文件。